背景 
在过去十年中，我们的双链 RNA (dsRNA) 抗体已被广泛用于检测和表征具有 dsRNA 基因组或中间体的动植物病毒。此外，抗 dsRNA 抗体可用作检测病原体的诊断工具，包括在石蜡包埋的固定组织样本中进行检测（Richardson 等，2010）。K1 单克隆抗体识别 dsRNA 的亲和力与我们广泛使用的 J2 抗体相似。可用于细胞和组织中dsRNA的组织学和细胞学检测。事实证明，在 J2 无法提供令人满意结果的罕见实验设置中，它作为 J2 的替代品特别有用，可以解决交叉反应和/或去除不需要的背景。K1 可用于检测多种病毒的 dsRNA 中间体，如肝炎病毒、泰勒氏鼠脑脊髓炎病毒或日本脑炎病毒。它用于检测培养细胞和固定石蜡包埋的组织学样品中的 dsRNA（参见出版物）。如果需要检测 Poly I:C，我们会高度使用 K1 而不是 J2，因为 K1 对这种合成的聚核糖核苷酸具有更高的亲和力（参见 Schönborn 等，1991，图 2）。K1 已成功用于免疫荧光显微镜、流式细胞术 (FACS) 和免疫捕获方法（如斑点印迹和 ELISA）。J5 IgG2b 抗体识别 dsRNA 的亲和力和特异性与我们的 J2 抗体非常相似（参见 Schonborn 等，1991），但具有不同的同种型——因此可以更灵活地同时检测 dsRNA 与其他标记物，尤其是在免疫荧光显微镜下, 并已被用于检测鱼病毒传染性胰腺坏死病毒 (IPNV)（Levican-Asenjo 等人，2019 年）或 Vero 细胞中的 ECMV 的复制中间体。J5 抗体可以检测所有测试形式的 dsRNA，包括来自登革热病毒、脑心肌炎病毒、痘苗病毒、呼肠孤病毒或黄瓜花叶病毒等病毒的 poly(A):poly(U)、poly(I):poly(C) 和 dsRNA病毒。与我们的其他抗体类似，J5 的 dsRNA 结合与序列无关，只要 dsRNA 的长度超过 40nt。该抗体不与 ssRNA、ssDNA 或 dsDNA 发生反应。J5 已在核酸 ELISA、免疫印迹和免疫荧光显微术中成功测试。J5 抗体可以检测所有测试形式的 dsRNA，包括来自登革热病毒、脑心肌炎病毒、痘苗病毒、呼肠孤病毒或黄瓜花叶病毒等病毒的 poly(A):poly(U)、poly(I):poly(C) 和 dsRNA病毒。与我们的其他抗体类似，J5 的 dsRNA 结合与序列无关，只要 dsRNA 的长度超过 40nt。该抗体不与 ssRNA、ssDNA 或 dsDNA 发生反应。J5 已在核酸 ELISA、免疫印迹和免疫荧光显微术中成功测试。J5 抗体可以检测所有测试形式的 dsRNA，包括来自登革热病毒、脑心肌炎病毒、痘苗病毒、呼肠孤病毒或黄瓜花叶病毒等病毒的 poly(A):poly(U)、poly(I):poly(C) 和 dsRNA病毒。与我们的其他抗体类似，J5 的 dsRNA 结合与序列无关，只要 dsRNA 的长度超过 40nt。该抗体不与 ssRNA、ssDNA 或 dsDNA 发生反应。J5 已在核酸 ELISA、免疫印迹和免疫荧光显微术中成功测试。该抗体不与 ssRNA、ssDNA 或 dsDNA 发生反应。J5 已在核酸 ELISA、免疫印迹和免疫荧光显微术中成功测试。该抗体不与 ssRNA、ssDNA 或 dsDNA 发生反应。J5 已在核酸 ELISA、免疫印迹和免疫荧光显微术中成功测试。

同义词： Anti-dsRNA mAb 比较集

来源 
雌性 DBA/2 小鼠腹膜内注射 50 ug L-dsRNA 和 75 ug 甲基化牛血清白蛋白的混合物，乳化在*弗氏佐剂中。在几次加强后，脾细胞与 Sp2/0-Agl4 骨髓瘤细胞融合以产生杂交瘤克隆。

产品 
小鼠单克隆抗体 J2 可识别双链 RNA (dsRNA)，前提是螺旋长度大于或等于 40 bp。dsRNA 识别与抗原的序列和核苷酸组成无关。迄今为止研究的所有天然存在的 dsRNA（40-50 种）以及 poly(I).poly(C) 和 poly(A).poly(U) 都已被 J2 识别，尽管在某些分析中它对 poly (I).poly(C)比其他dsRNA抗原低约10倍。小鼠单克隆抗体 J5 可识别双链 RNA (dsRNA)，前提是螺旋长度大于或等于 40 bp。dsRNA 识别与抗原的序列和核苷酸组成无关。到目前为止，研究了所有天然存在的 dsRNA（40-50 种）以及 poly(I).poly(C) 和 poly(A)。poly(U) 已被 J5 识别，尽管在某些分析中它对 poly(I).poly(C) 的亲和力比对其他 dsRNA 抗原的亲和力低约 10 倍。mAb K1 可识别双链 RNA (dsRNA)，前提是螺旋长度大于或等于 40 bp。dsRNA 识别与抗原的序列和核苷酸组成无关。迄今为止研究的所有天然存在的 dsRNA（40-50 种）以及 poly(I).poly(C) 和 poly(A).poly(U) 都已被 K1 识别。正如 Schönborn 等人所述。K1 对 poly(I).poly(C) 的亲和力高于对其他 dsRNA 抗原的亲和力，尽管表观结合常数的差异在不同的实验条件下可能会有所不同。mAb K1 可识别双链 RNA (dsRNA)，前提是螺旋长度大于或等于 40 bp。dsRNA 识别与抗原的序列和核苷酸组成无关。迄今为止研究的所有天然存在的 dsRNA（40-50 种）以及 poly(I).poly(C) 和 poly(A).poly(U) 都已被 K1 识别。正如 Schönborn 等人所述。K1 对 poly(I).poly(C) 的亲和力高于对其他 dsRNA 抗原的亲和力，尽管表观结合常数的差异在不同的实验条件下可能会有所不同。mAb K1 可识别双链 RNA (dsRNA)，前提是螺旋长度大于或等于 40 bp。dsRNA 识别与抗原的序列和核苷酸组成无关。迄今为止研究的所有天然存在的 dsRNA（40-50 种）以及 poly(I).poly(C) 和 poly(A).poly(U) 都已被 K1 识别。正如 Schönborn 等人所述。K1 对 poly(I).poly(C) 的亲和力高于对其他 dsRNA 抗原的亲和力，尽管表观结合常数的差异在不同的实验条件下可能会有所不同。迄今为止研究的所有天然存在的 dsRNA（40-50 种）以及 poly(I).poly(C) 和 poly(A).poly(U) 都已被 K1 识别。正如 Schönborn 等人所述。K1 对 poly(I).poly(C) 的亲和力高于对其他 dsRNA 抗原的亲和力，尽管表观结合常数的差异在不同的实验条件下可能会有所不同。迄今为止研究的所有天然存在的 dsRNA（40-50 种）以及 poly(I).poly(C) 和 poly(A).poly(U) 都已被 K1 识别。正如 Schönborn 等人所述。K1 对 poly(I).poly(C) 的亲和力高于对其他 dsRNA 抗原的亲和力，尽管表观结合常数的差异在不同的实验条件下可能会有所不同。

配方： 每个冻干样品都应用 100 µl 无菌蒸馏水复溶。然后将 mAb 置于 PBS 中，不含任何稳定剂或防腐剂，浓度为 1 mgr/ml。作为冻干程序的结果，重建的抗体可能含有少量聚集体形式的变性蛋白质，这可能会干扰某些应用，例如免疫组织化学（例如，通过提供高背景）。因此，我们强烈建议在使用和使用上清液之前对重组的抗体进行离心（微量离心）。

纯化方法： A蛋白-琼脂糖亲和层析。

纯度： 凝胶电泳纯 IgG 抗体。

浓度： 重构后的浓度：通过 A280 nm 测定的 1.00 mg/ml（A280 nm = 1.47 对应于 1 mg/ml 抗体）。

应用 
小鼠单克隆抗体 J2、J5 和 K1 可用于 ELISA、dsRNA 免疫印迹、免疫亲和层析，在某些系统中还可用于免疫组织化学（参见参考资料）。对于任何特定应用，每种抗体的最佳工作稀释度应通过滴定确定。请注意，dsRNA 免疫印迹之前的核酸分离必须通过聚丙烯酰胺凝胶电泳进行，因为从琼脂糖凝胶印迹后检测的灵敏度要低得多。不用于临床目的。仅供体外使用。

储存 
重建后的抗体应分装并储存在 -20 °C 或 -70°C。添加 10 mM 叠氮化纳后，未稀释的抗体也可以在 +4 °C 下短时间保存。对于长期储存，mAb 应保持冷冻。应避免重复冷冻/解冻循环。

运输条件： 在环境温度下运输。

注意 
本产品仅供研究和体外测试使用，不适用于涉及人类或动物的诊断或治疗程序。它可能含有危险成分。请参阅安全数据表 (SDS) 了解更多信息和正确处理程序。根据当地法规处理产品残余物。本数据表在合理范围内尽可能准确，但 Exalpha Biologicals 对本信息中的任何不准确或遗漏不承担任何责任。

参考 
1) F. Weber、V. Wagner、SB Rasmussen、R. Hartmann、SR Paludan。双链 RNA 由正链 RNA 病毒和 DNA 病毒产生，但负链 RNA 病毒检测不到。J Virol (2006), 80(10):5059-64。doi：10.1128/JVI.80.10.5059-5064.2006。2) S. Welsch、S. Miller、I. Romero-Brey、A. Merz、CKE Bleck、P. Walther、SD Fuller、C. Antony、J. Krijnse-Locker、R. Bartenschlager。登革热病毒复制和组装位点的组成和三维结构。细胞宿主与微生物 (2009) 5(4)；365-375。doi.org/10.1016/j.chom.2009.03.007。3) K. Knoops, M. Bárcena, RW Limpens, AJ Koster, AM Mommaas, EJ Snijder。动脉病毒复制结构的超微结构表征：重塑内质网以适应病毒 RNA 合成。J 维罗尔。(2012) 86(5)；2474-2487。doi:10.1128/JVI.06677-11。4) SJ Richardson、A. Willcox、DA Hilton、S. Tauriainen、H. Hyoty、AJ Bone、AK Foulis、NG Morgan。使用针对 dsRNA 的抗血清检测福尔马林固定石蜡包埋组织中的病毒感染。J 临床病毒。(2010) 49(3); 180-5。doi：10.1016/j.jcv.2010.07.015。5) K. Karikó、H. Muramatsu、J. Ludwig、D. Weissman，生成最佳 mRNA 治疗：HPLC 纯化消除免疫激活并改善核苷修饰的蛋白质编码 mRNA 的翻译，核酸研究 (2011) 39 (21); e142，https://doi.org/10.1093/nar/gkr695。6) Schönborn, J., Oberstrass, J., Breyel, E., Tittgen, J., Schumacher, J. 和 Lukacs, N. (1991) 双链 RNA 的单克隆抗体作为粗核酸中 RNA 结构的探针提取物。核酸研究 19, 2993-3000。7) Lukacs, N. (1994) 通过双链 RNA 的单克隆抗体检测植物中的病毒感染和区分共存病毒。J. 维罗尔。方法 47, 255-272。8) Lukacs, N. (1997) 通过结构特异性抗 RNA 抗体检测有义：反义双链体。在：反义技术。实用方法，C. Lichtenstein 和 W. Nellen（编辑），第 281-295 页。IRL 出版社，牛津。9) Levicán-Asenjo J、Soto-Rifo R、Aguayo F、Gaggero A、Leon O。鲑鱼细胞 SHK-1 通过巨胞饮作用将传染性胰腺坏死病毒内化。J Fish Dis。2019 年 7 月；42(7)：1035-1046。doi：10.1111/jfd.13009。近期出版物：Tirosh Shapira、I. Abrrey Monreal、Sébastien P Dion、Mason Jager、Antoine Désilets、Andrea D Olmstead、Thierry Vandal、David W Buchholz、Brian Imbiakha、Guang Gao、Aaleigha Chin、William D Rees、Theodore Steiner、伊万·罗伯特·纳比、埃里克·马尔索、朱莉·萨勒、艾弗里·奥古斯特、格琳德·范·德·瓦勒、加里·R·惠特克、皮埃尔-吕克·布德罗、赫克托·C·阿吉拉尔、理查德·勒杜克、弗朗索瓦·让。一种新型高效 TMPRSS2 样蛋白酶抑制剂可阻断 SARS-CoV-2 相关变异，并广泛保护小鼠免受感染和死亡。bioRxiv 2021.05.03.442520；doi：https://doi.org/10.1101/2021.05.03.442520 https://biorxiv.org/cgi/content/short/2021.05.03.442520v1